Ultrastructural study of oogenesis in Marphysa sanguinea (Annelida: Polychaeta: Eunicida) from the Lagoon of Tunis

• Monia Elbarhoumi ^[1] ; Patrick Scaps ^[2] ; Chakib Djediat ^[3] ; Fathia Zghal ^[1]
  1. [1] Laboratoire de Biologie de la Reproduction et du Développement animal, Faculté des Sciences de Tunis, Campus universitaire, 2092 Tunis El Manar, Tunisie
  2. [2] Laboratoire de Biologie Animale, Université des Sciences et Technologies de Lille, 59 655 Villeneuve d’Ascq Cédex, France
  3. [3] Muséum National d’Histoire Naturelle, Paris, Service commun de Microscopie électronique des Laboratoires des Sciences de la Vie. 57, rue Cuvier/case 39, 75231 Paris Cedex 05.

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• Localización: Scientia Marina, ISSN 0214-8358, Vol. 78, Nº. 1, 2014, págs. 99-113
• Idioma: inglés
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• Resumen
  • español

    Se estudiaron las características ultraestructurales de la ovogénesis del poliqueto de la familia Eunicidae, Mar- physa sanguínea (Montagu, 1815), caracterizado por ser iteróparo y presentar una largo periodo de vida vital. Los ejemplares proceden de la Laguna de Túnez y se estudiaron tanto mediante microscopía óptica como mediante microscopía electrónica de transmisión. Esta especie presenta ovarios consistentes en agrupaciones de células germinales celómicas rodeadas por una envoltura delgada de células foliculares derivado del peritoneo y unidos a los vasos sanguíneos genitales. La ovogénesis es asincrónica, por lo que se observan células germinales en fases premeióticas y previtelogénicas en cada clúster, y es de tipo extraovárico. En cada clúster, los ovocitos más diferenciados se desprenden y flotan libres en la cavidad abdominal donde experimentan la vitelogénesis como celdas aisladas. En el interior del ovario, los ovocitos jóvenes están conectados con células foliculares mediante puentes intercelulares, los cuales según los datos obtenidos, permiten la transferencia de ribosomas, cuerpos multivesiculares y cuerpos densos desde las células foliculares a los ovocitos en las primeras etapas de vitelogénesis. Diferentes pruebas morfológicas apoyan el origen heterosintético (presencia de vesículas endocitíticas, abundantes microvellosidades adornando la superficie del huevo) y autosintético (orgánulos proteosintéticos bien desarrollados, la formación de vesículas a partir de la membrana externa de la envoltura nuclear) del vitelo en M. sanguinea. El material citoplasmático de los ovocitos maduros se distribuye asimétricamente; grandes gotas de lípidos (1,5 µm) y grandes esferas de vitelo (6 µm) ocupan el polo vegetal del ovocito, mientras que esferas pequeñas de vitelo (2-3 µm) y numerosos orgánulos membranosos (mitocondrias, cisternas del retículo endoplásmatico) ocupan el hemisferio animal. Los ovocitos maduros presentan gránulos corticales (entre esféricos y alargados y de hasta 1,8 µm) en el córtex, mientras que en el ooplasma cortical del polo animal se presentan agregados fibrogranulares (“nuage”) similares a los del núcleo. Estos agregados probablemente provienen del núcleo y representan determinantes citoplasmáticos maternos del destino de las células embrionarias. Una vez completada la vitelogénesis, los ovocitos miden entre 250-300 µm de diámetro.

  • English

    Ultrastructural features of oogenesis of the iteroparous and long lived eunicid polychaete Marphysa sanguinea (Montagu, 1815) from the Lagoon of Tunis were studied using both light and transmission electron microscopy methods. The ovaries consist of c oelomic germ-cell clusters surrounded by a thin envelope of follicle cells derived from the peritoneum. They are attached to the genital blood vessels. Oogenesis is asynchronous; therefore, germ cells in premeiotic and previtellogenic phases are observed in one cluster. The oogenesis is of the extraovarian type. In each cluster the more differentiated oocytes detach and float free in the coelomic cavity where they undergo vitellogenesis as solitary cells. Inside the ovary, follicle cells are connected to young oocytes by intercellular bridges and data suggest that in the early stages of vitellogenesis, ribosomes, multivesicular bodies and dense bodies are transferred from the follicle cells to the oocytes through the intercellular bridges. Different morphological evidence supports the heterosynthetic (presence of endocytotic vesicles, abundant microvilli adorning the surface of the egg) and autosynthetic (proteosynthetic organelles well developed, formation of blebs by the external membrane of the nuclear envelope) origin of yolk in M. sanguinea. The cytoplasmic material of the mature oocytes is asymmetrically distributed; large lipid droplets (1.5 µm in size) and large yolk spheres (6 µm in size) occupy the vegetal pole of the oocyte while small yolk spheres (2-3 µm in size) and numerous membranous organelles (mitochondria, cisternae of endoplasmic reticulum) occupy the animal hemisphere. Spherical to elongated cortical granules up to 1.8 µm in size are located in the cortex of the mature oocytes. Finally, fibrogranular aggregates (“nuage”) similar to that within the nucleus are observed in the cortical ooplasm located in the animal pole of mature oocytes. These aggregates probably come from the nucleus and represent maternal cytoplasmic determinants of embryonic cell fate. Oocytes that have completed vitellogenesis measure 250–300 µm in diameter.