Resumen de Virosis en clones internacionales de papa (Solanum tuberosum L.) en el valle de Toluca, México

Héctor Lozoya Saldaña, Vladimir Sánchez López, Reynaldo Román Vázquez, Alejandro Hernández Vilchis

• español

  Desde 1995 el Programa Internacional Cooperativo del Tizón Tardío de la Papa (PICTIPAPA) ha introducido a México anualmente más de 2500 clones de papa del extranjero bajo la modalidad de cuarentena-custodia, por lo que, a fin de detectar y eliminar oportunamente agentes patógenos, es importante su continuo cotejo sanitario. Aquí se reporta dicho cotejo respecto a virus. Por serología enzimática (ELISA) de folíolos y tubérculos de 352 clones de papa (Solanum tuberosum L.) de lotes experimentales internacionales, 17% resultó positivo para el potexvirus X (PVX); 1.1%, para el potyvirus Y (PVY); 3.1%, para el carlavirus S (PVS); 1.4% para el luteovirus del enrollamiento de la hoja (PLRV); y 1.1%, para el potexvirus mosaico aucuba de la papa (PAMV). No se detectaron el carlavirus M (PVM), el potyvirus A, ni el tymovirus latente andino de la papa (APLV). De los clones muestreados en el verano de 1998 evaluados por primera vez, 20% resultó positivo para alguno de los virus, 31% de los de segundo año y 60% de los de tres años, deduciéndose que la incidencia viral fue por infecciones primarias en el campo. Esto se respalda por los resultados de muestreos adicionales en clones con síntomas en 1999, que sólo evidenciaron presencia limitada de PVX, PVS y PLRV. Por otro lado, en los sondeos del año 2000 se detectó 3% de infección únicamente de PVX en clones de tercero y cuarto año. En el muestreo de 1998 el PAMV se encontró mezclado con el PVX en el tubérculo de un clon y con el del enrollamiento de la hoja en tubérculos de otros dos, sin síntomas o reacción serológica positiva en el follaje, por lo que se hicieron ensayos adicionales de serología y de transmisión. La inoculación mecánica de la mezcla PAMV+PVX (ambos transmisibles mecánicamente) sólo indujo síntomas en Datura stramonium y en Capsicum annuum, pero la ELISA fue negativa para ambos virus en D. stramonium y positiva para el PAMV en C. annuum, Nicotiana rustica y en Solanum tuberosum, evidenciando en D. stramonium : a) Falta de transmisión de dichos virus a esa planta diferencial, b) L a posible presencia de agente(s) patógeno(s) no identificado(s), y c) La transmisión sólo del PAMV en las otras solanáceas. La inoculación con áfidos también sólo indujo síntomas en D. stramonium y en C. annuum, pero únicamente de la savia con PAMV+PLRV (ambos transmisibles por insectos). Por ELISA se confirmó la presencia del PAMV nada más, tanto en las diferenciales mencionadas como en N. tabacum cv. Xanthi, N. occidentalis, Lycopersicum esculentum y en Solanum tuberosum . Con esto se demuestra la presencia y transmisión exitosa solamente del PAMV, desapareciendo los otros dos virus (PVX y PLRV). Después de 1998 no se volvió a encontrar al PAMV en el campo. Posiblemente la eliminación natural de los genotipos de papa susceptibles al tizón tardío (Phytophthora infestans Mont. De Bary) también nulificó la de por sí limitadapresencia de este virus.

• English

  Since 1995, the International Cooperative Program for Potato Late Blight (PICTIPAPA) has introduced annually more than 2500 foreign potato clones into México under quarantine-custody regulations, which require constant sanitary monitoring for opportune detection and elimination of pathogenic agents. We report here the results of the monitoring process for viral infections. Enzyme-linked immunosorbant assay (ELISA) detection in leaflets and tubers of 352 randomly sampled potato (Solanum tuberosum L.) clones, from international experimental plots, resulted in 17% positive tests for potexvirus X (PVX), 1.1% for potyvirus Y (PVY), 3.1% for potato virus S (carlavirus, PVS), 1.4% for potato leaf roll virus (PLRV, leuteovirus), and 1.1% for potato aucuba mosaic potexvirus (PAMV). No samples tested positive for potato virus M (carlavirus, PYM), potato virus A (potyvirus, PVA) or Andean potato latent virus (tymovirus, APLV). Twenty percent of the clones sampled during the summer of 1998 tested positive for one of the viruses during the first year, 31% during the second year, and 60% on the third year. Viral incidence was apparently due to primary field infection, as supported by further testing of additional symptomatic clones sampled in 1999, with only a limited presence of PVX, PVS, and PLRV. Samples of third and fourth year clones taken in 2000, however, revealed 3% initial infection by PVX only. Samples from 1998 detected PAMV mixed with PVX in the tubers of one clone and leaf roll virus in tubers of another two clones with an absence of symptoms or positive serological reactions in foliage. Additional serological and transmission assays were performed on these samples. Mechanical inoculation with PAMV+PVX (both transmitted mechanically) induced symptoms only in Datura stramonium and in Capsicum annuum. The ELISAs were negative, however, for both viruses in D. stramonium and positive for PAMV in C. annuum, Nicotiana rustica and Solanum tuberosum.

  Presumably the viruses failed to infect D. stramonium while the presence of unidentified pathogenic agents produced symptoms and PAMV alone infected the other Solanaceae. Aphid inoculation with both viruses from sap with PAMV+PLRV (both transmissible by insects) induced symptoms only in D. stramonium and C. annuum . ELISAs confirmed only the presence of PAMV in the indicator species mentioned as well as in N. tabacum cv. Xanthi, N. occidentalis, Lycopersicum esculentum and in Solanum tuberosum. These results demonstrate the presence and successful transmission of only PAMV, with loss of the other two viruses (PVX and PLRV). PAMV was not found again in the field after the 1998 sampling. Perhaps natural elimination of susceptible potato genotypes by potato late blight (Phytophthora infestans Mont. De Bary) eradicated the already limited presence of PAMV.