Liliana Corozo, Eduardo Héctor, Fátima Macías Yépez, Boris Vásquez, Bryan Pinargote, Gloria Cobeña, Alma Mendoza, Francisco Arteaga Alcívar
Se investigaron las condiciones esenciales para la micropropagación in vitro de las variedades ecuatorianas de yuca INIAP Portoviejo 650 e INIAP Portoviejo 651. Se plantó un banco de donantes con estacas de plantas vigorosas y sanas. En las etapas in vitro se empleó el medio de Murashige y Skoog (MS). En el establecimiento se adicionó Amoxicilina 500® y se evaluó la supervivencia de los explantes y la contaminación. En la multiplicación se utilizó 0,50 mg L-1 de 6-bencilaminopurina (6-BAP) + 0,30-0,50 mg L-1 de ácido giberélico (GA3) y se evaluó la longitud de las plantas, el diámetro del tallo, el número de brotes y el número de hojas. Para el enraizamiento se empleó 1 mg L-1 de ácido naftalenacético (ANA) + 0,01 mg L-1 de ácido giberélico (GA3), y se evaluó la longitud de las plantas, el diámetro del tallo, el número de raices y la longitud de las raices. En la aclimatación se evaluó la longitud de la planta, el diámetro del tallo, el número de brotes por planta y el número de hojas por planta. Se logró 100% de supervivencia en el establecimiento. En la multiplicación y el enraizamiento se observaron interacciones significativas variedad x medio de cultivo, atribuibles al balance entre las fitohormonas presentes en los tejidos vegetales y los reguladores adicionados al medio. Se alcanzaron altos porcentajes de aclimatación (83-87%). Se logró determinar las condiciones esenciales para micropropagar estas variedades de yuca, y se recomiendan estudios más profundos para estandarizar protocolos con vistas a su multiplicación masiva como via de entrega de propágulos a los agricultores.
The essential conditions for the in vitro micropropagation of the Ecuadorian cassava varieties INIAP Portoviejo 650 and INIAP Portoviejo 651 were studied. A donor bank consisting of cuttings taken from vigorous, healthy plants was planted. In the in vitro stages, the medium of Murashige and Skoog (MS) was used. Amoxicillin 500® was added to the establishment and the survival of explants and contamination was evaluated. In multiplication, 0.50 mg L-1 of 6-benzylaminopurine (6-BAP) + 0.30-0.50 mg L-1 of gibberellic acid (GA3) were used; plant height, stem diameter, and the number of shoots and leaves were evaluated. For rooting, 1 mg L-1 naphthalene acetic acid (ANA) + 0.01 mg L-1 gibberellic acid (GA3) was used; the parameters evaluated were plant height, stem diameter, number of roots and root length. During acclimatization, plant height, stem diameter, and the number of shoots and leaves per plant were assessed. 100% survival was achieved in the establishment. In the multiplication and rooting, significant interactions were observed variety x culture medium, attributable to the balance between the phytohormones present in the plant tissues and the regulators added to the medium. High percentages of acclimatization were reached (83-87%). It was possible to determine the essential conditions for micropropagation of these cassava varieties, but more in-depth studies are recommended to standardize protocols with a view to their mass multiplication as a means of delivering propagules to farmers.
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